BiyolojiTıp

Tümöroidler

Yazan: Marco Tatullo, Benedetta Marrelli, Caterina Benincasa, Elisabetta Aiello, Irina Makeeva, Barbara Zavan, Andrea Ballini, Danila De Vito, Gianrico Spagnuolo.

Çeviren: Buse Mehmetoğlu

Düzenleyen: Alper Topal & Ümit Sözbilir

Özet: “Tümöroid” terimi, “tümör benzeri organoid” anlamına gelmektedir ve bu yapılar genellikle kanser hastalarından alınan birincil tümörlerden elde edilebilmektedir. Tümöroidler, insan tümör mikroçevresini (TME) taklit etme yeteneğine sahip olup günümüzde, kanserin biyolojisini derinlemesine incelemek ve onkolojik tedavilerde kullanılacak yeni ilaçların araştırma ve geliştirilmesinde umut verici bir model olarak değerlendirilmektedir.

Giriş

Tamamen in vitro ortamda büyütülen 3 boyutlu tümöroidler, hücrelerin alındığı birincil dokuya benzer 3 boyutlu organoidler oluşturacak şekilde kendiliğinden kümelenebilir. [2] İnsan tümör mikroçevresini (TME) taklit edebilme yetenekleri sayesinde, hassas tıp alanında kullanılacak yeni kanser ilaçlarının uygun maliyetli araştırmaları için umut vaat etmektedir. [3]

Yıllar içinde hücre kültürü için 3 boyutlu iskeleler üretmek adına çeşitli yöntemler geliştirilmiştir. Bunların arasında iyi bilinen bir strateji, hücreleri döner şişelere yerleştirip sürekli karıştırarak damla damla büyüyen küresel hücre kümelerinin oluşturulmasını sağlayan bir yöntemdir. Ancak bu teknik, büyük miktarlarda bir kültür ortamı ve özel ekipmanlar gerektirmektedir. Bahsedilen bu yöntemin üstesinden gelmek için 3 boyutlu mikro-kalıplar adı verilen alternatif teknikler araştırılmıştır: Bu teknikler yalnızca sferoidler1 değil, farklı şekillerde kümeler üretmeyi de sağlamıştır. [4]

Kanser Araştırmalarında Tümöroidlerin Rolü

Kanserin başladığı lokal mikroçevre hakkında bilgi edinmek, kanser hücrelerinin kaderini belirlemede rol oynayabilmektedir. Örneğin meme kanseri, hücre ve hücreler arası madde (HAM)2 arasında doğrudan temas ve sinyal molekülleri aracılığıyla karmaşık etkileşimler oluşturarak yüksek derecede organize olmuş bir hücreler arası madde yapısına dönüşmektedir. [5] Hücreler arası maddenin zarar görmesi, kanser başlangıcını tetikleyen bazı faktörlerin uyarılması için uygun koşullar yaratabilmektedir. [3] Bu yaklaşımı daha yakından incelemek amacıyla meme kanseri hücrelere hücreler arası madde kullanılarak tümöroidler oluşturulmuştur: Bunlar farelerin meme bezlerine enjekte edildikten sonra diğer organlardan elde edilen kök hücrelerin büyük bir farklılaşma ve büyüme göstermesini sağlamıştır. [6] Tümöroidler ayrıca, sağlıklı meme mikroçevresinin meme kanseri hücrelerinde fizyolojik bir davranışı teşvik edip etmediğini ve kanser hücrelerinin geliştirilen ilaçlara karşı verdiği yanıtı anlamak amacıyla kullanılmıştır. [7]

Başka bir çalışmada, birincil ve metastatik kolorektal adenokarsinomdan türeyen tümöroidler, Kirsten sıçan sarkomu (K–RAS) mutasyonunun kolorektal adenokarsinom büyümesini nasıl etkilediğini incelemek amacıyla kullanılmıştır. Çalışmaya göre K–RAS proteini, büyüme sinyallerinin hücre çekirdeğinde iletilmesine katkıda bulunarak hücre büyümesinin artmasına neden olmaktadır. [8] Anormal K–RAS mutasyonları, epitel hücrelerinde aşırı çoğalmaya yol açarak istilacı adenokarsinomların gelişimini tetiklemiş ve bu süreç, K–RAS yolaklarının kolorektal kanserde çoğalmasına neden olmuştur. [9]

Tümöroidler üzerine yapılan in vitro araştırmalar, otolog3 hücreler arası maddeden türetilen 3 boyutlu doku iskeleleri üzerinde kültürlenen kanser hücrelerinin, in vivo ortamda gelişen aynı mikroçevreyi eksiksiz bir şekilde yeniden üretebilme yeteneğine sahip olduğunu göstermiştir. Yeni nesil kemoterapi tedavilerinin yan etkilerini öngörmek ve zararlı bağışıklık tepkilerini incelemek amacıyla, güvenilir ve karmaşık kanser modellerinin güvenli ve kontrollü deney koşullarında test edilmesine olanak sağlamıştır. [8] (Tablo 1)

Son zamanlarda, farklı kolorektal kanser hastalarından elde edilen tümöroidlerde yapılan analizler sonucunda, ortak bir moleküler model elde edilmiştir. Buna ek olarak araştırmacılar, tedavisi in vivoda yapılan kanserlerin kemoterapiye verdiği cevapla tümöroidlerin cevabının aynı olduğunu gözlemlemiştir. İnsan kaynaklı küçük tümöroidler, fare modellerine enjekte edildiğinde, kısa bir uyum süresinin ardından tümöroidlerin akciğer ve karaciğerde metastaz yaparak agresif kolorektal kanserler oluşturduğu görülmüştür. Ardından fare modellerinin kolon mukozasına yerleştirilen bu tümöroidler, insanlardakiyle karşılaştırılabilir terapötik etkiler gösteren yeni ilaçlarla tedavi edilmiştir. [10] (Tablo 1)

Araştırmacılar, kanserin ilerlemesinde bağışıklık sistemi hücrelerinin görevlerini incelemek üzere tümöroid bazlı modeller kullanmıştır. Kullanılan bu yöntem, agresif kanserlerde doz–etki oranını ayarlamak için farklı kemoterapi tedavilerinin bağışıklık tepkisi üzerindeki etkisinin değerlendirilmesini sağlamıştır. [11]

Beyin tümörleri üzerine yapılan çalışmalarda da önemli bir rolü olan tümöroidler, neoplastik beyin organoid (NeoCOR) adlı 3 boyutlu bir in vitro çalışma modelinin geliştirilmesinde kullanılmıştır. Tümörün yayılma kapasitesi ve ilaçların etkileri, belirli mutasyonları taşımak üzere CRISPR–Cas9 ile modifiye edilen hücreler kullanılarak araştırılmıştır. NeoCOR modeli araştırma sonucunda beyin kanseriyle ilgili tümör ortamlarının tamamını başarılı bir şekilde yeniden oluşturmuştur. [12]

Karaciğer kanserini incelemek için boyutları 0.5 mm’yi bulan mini–tümöroidler üreten araştırmacılar, bu sayede 29 yeni ilaç test etmiştir. Bu ilaçlardan biri, ERK proteininin aktivasyonu engellemeyi başarmış ve gelecekteki karaciğer kanseri tedavileri için bir seçenek hâline gelmiştir. [13] In vitro çalışmaların ardından mini–tümöroidler denek farelerin karaciğerlerine enjekte edilmiş ve karaciğer kanserine sahip fareler tasarlanan ilaçla tedavi edilmiştir. Ardından yapılan in vivo analizlerde tedavi edilen farelerin tümör büyümesinde önemli bir ölçüde azalma olduğu gözlemlenmiş ve ön in vitro testlerin güvenilirliği kanıtlanmıştır. [13] (Tablo 1) In vitro testlerin güvenirliğini ortaya koyan başka bir klinik çalışma ise radyoterapi ve kemoterapi kullanılarak tedavi edilen kolorektal kanser hastaları üzerinde yapılmıştır. Hastaların hücrelerinde ve dokularında gözlemlenen biyolojik etkiler, tümöroidler tarafından in vitro ortamda başarıyla yeniden üretilmiştir. [14]

Tümöroidler aynı zamanda kanser hücreleri, otolog mezenkimal kök hücreleri (MKH) ve hücreler arası maddenin aralarındaki etkileşimlerin anlaşılmasında rol oynamıştır. [15] Bununla birlikte, pankreas kanseri üzerine yapılan yakın tarihli bir çalışmada indüklenmiş pluripotent kök hücreler (PKH) araştırılmıştır. Bu çalışmada kök hücreler ve pluripotent kök hücrelerin kombinasyonunun, stromaları4 içinde işlevsel pankreas hücrelerini kusursuz bir şekilde yeniden üretebildiği gösterilmiştir. Bu hücrelerin kanser hücreleriyle olan etkileşimleri incelenmiştir. [16]

Kanser dokularından izole edilen kök hücreler, kendiliğinden tümör benzeri yapılara dönüşebilmekte ve bu davranışları hücrelerin bulunduğu yerel çevreden etkilenmektedir. 2018 yılında gerçekleştirilen bir çalışmada, kanser dokularından elde edilen kök hücrelerin davranışları, standart doku kültür plakaları (DKP) ve nanokültür plakalarında (NKP) olmak üzere iki farklı deneysel koşulda incelenmiştir. NKP’lerde büyütülen kök hücreler, tümöroidlerle daha sıkı hücreler arası bağlar oluşturmuş, birincil tümörlerin özelliklerini birebir yansıtan morfolojiler ve yüzey belirteçleri göstermiştir. Ayrıca NKP’lerde büyütülen kök hücrelerin, kanser büyümesindeki artışla bağlantılı olan epitel hücre adezyon molekülleri (EpCAM) ve ısı şok proteini 90 (IŞP 90) içeren eksozomları salgılayabildiği görülmüştür.  DKP’lerde büyütülen kök hücreler ise NKP’lerde büyütülen kök hücrelerin aksine hücre farklılaşması ile ilgili genlerin ifadesini artırmıştır. [17]

Tablo 1. Tümöroid Bazlı Kanser Tedavisi: in vitro ve in vivo Çalışmalar

Araştırma ModeliKanser TürüUygulanan Tedavi YöntemiGözlenen Etkiler
Engelbreth–Holm–Swarm Fare Sarkomu HücreleriMeme KanseriKemoterapiTümöroidlerin, meme kanseri olan hastalarınkine benzer morfolojiye ve gen ifadelerine sahip olduğu görüldü. [18]
Kolorektal Adenokarsinom HücreleriMetastatik Kolorektal AdenokarsinomuKemoterapiK–RAS proteini, hücre büyümesini ve mitotik aktiviteyi artırdı. [19]
Kemirgen Mukozasına Enjekte Edilen İnsan TümöroidleriRektal KanserKemoterapiNakledilen tümöroidler, hastalara uygulanan tedavilere karşı eşit hassasiyet gösterdi. [10]
Kolorektal Karsinom HücreleriKolorektal KarsinomKemoterapi3 boyutlu tümöroidler, yeni ilaç tedavileri üzerine geçerli bir in vitro yaklaşım sundu. [11]
Nöroplastik Beyin Organoidi İsimli 3 Boyutlu ModelBeyin TümörüKemoterapiNeoCOR, beyin tümörleri üzerine yapılan klinik çalışmalar için 3 boyutlu bir model olarak daha iyi performans gösterdi. [12]
Farklı 3 Boyutlu Tümöroidlerdeki Kanser HücreleriKaraciğer KanseriKemoterapiSCH77984 bileşiğinin, ERK proteinini inhibe ederek tümörojenezde kritik bir rol oynadığı görüldü. [13]
Farelerde Kültüre Edilmiş TümöroidlerKaraciğer KanseriKemoterapiSCH77984 kullanılarak tedavi edilen bir farede, bu bileşiğin tümör büyümesini azalttığı gözlemlendi. [13]
Kültüre Edilmiş TümöroidlerKolorektal ve Karaciğer KanseriKemoterapiOrganoidlerin, kaynaklandıkları orijinal tümörün biyolojik özelliklerini taşıdığı görüldü. [20]
Tümöroid Ortamındaki Adipoz Doku Kaynaklı Kök HücrelerFarklı Kanser TürleriKemoterapiAdipoz doku kaynaklı kök hücrelerin genetik kararlılıklarını koruduğu ve orijinal dokularının tüm fizyolojik özelliklerini muhafaza ettiği görüldü. [15]
Fare Modellerinde ESC’ler ve iPSC’ler İçeren TümöroidlerPankreatik TümörKemoterapiESC ve iPSC tümöroidleri, fonksiyonel pankreas hücreleri oluşturdu. [16]
Çeşitli Tümöroidlerden Alınan Çeşitli Hücre HatlarıÇeşitli Kanser TürleriKemoterapi3 boyutlu tümöroidlerin, tümöre özgü eksozom salınımı gerçekleştirebildiği görüldü. [17]
Oral Mukoza OrganoidleriOral Skuamöz Hücreli KarsinomKemoterapiOral kanser tümöroidlerinin, kişiselleştirilmiş tedavi için etkili bir araç olduğu kanıtlandı. [21]
Hücre Karsinomu OrganoidleriSkuamöz Hücreli Baş Boyun Kanseri (SSHBBK)KemoterapiTümöroidler, birincil tümörlerin hem genetik hem de moleküler özelliklerini taklit edebildi. [22]
Skuamöz Hücreli Baş Boyun Kanserinden Türetilen 31 Tümöroid HattıKemoterapiTümöroidler, skuamöz hücreli baş boyun kanserine yönelik kişiselleştirilmiş tedavi çalışmalarında rol oynadı. [21]
Sağlıklı Dokudan ve Tümör Dokusundan Alınan OrganoidlerFotodinamik TerapiFotodinamik terapinin, epidermal büyüme faktörünü (EGFR) ve tümör büyümesini etkileyebileceği görüldü. [21]
Tümör Dokusundan Alınan OrganoidlerKemoterapiTümöroidler, IL-6 baskılanmasının skuamöz hücreli baş boyun kanserine karşı ilaçların etkinliğini gözlemlemek için kullanıldı. [23]
Metastatik Kolon ve Gastroözofageal Karsinomun Metastatik HücreleriKolon Kanseri ve Gastroözofageal Kavşak AdenokarsinomuSkuamöz Hücreli Baş Boyun Kanseri (SSHBBK)Farklı ilaçlara duyarlılığı ve özgüllüğü test etmek üzere 3 boyutlu tümöroidler kullanıldı. [4]

Üç Boyutlu Tümöroidlerin Özellikleri

Organoid, kök hücrelerden veya progenitör5 organlardan türeyen in vivo türevine morfoloji ve fonksiyonellik açısından benzerlik gösteren 3 boyutlu in vitro hücre kümeleridir. [24] Bu kümelerin en önemli özelliği, “kendiliğinden organizasyon” adı verilen, hücreleri kendi başlarına organize etme ve histojenik6 özelliklere sahip yapılar oluşturacak şekilde ayırabilme yeteneğidir. [25]

Tümöroidlerin klinik araştırmalarda kültürlenmesi, aynı organa ait farklı hücre tiplerinin bir arada yetiştirilmesi olanağını sağlar. Farklı hücrelerin doğrudan kültürlenebilmesi, araştırmacının in vivo bir sistemin özelliklerini incelemesine imkân sağlar. Bu sayede, sistemi oluşturan tüm hücreler göz önünde bulundurularak etkileşimleri uygun şekilde analiz edilebilir. [24]

Dokudaki neoplastik hücreler fizyolojik olarak, hücre–hücre ve hücre–hücreler arası madde–hücre teması tarafından belirlenen besin gradyanları ve sinyal iletimi mekanizmalarıyla stabilize edilen karmaşık bir üç boyutlu ağ içinde organize olurlar. Üç boyutlu kültür sistemleri sayesinde oluşturulan modeller, yukarıda belirtilen gereksinimleri karşılayabilir ve preklinik tümör modelleri olarak kullanılabilir. [26] Çok hücreli sferoidler yalnızca hücre–hücre değil, aynı zamanda hücre–matris bağlantılarının bir ağını belirleyen geniş bir hücreler arası maddeyi içerebilir. 3 boyutlu modelin özel in vitro etkileşimleri hormonlar ve büyüme faktörleri gibi biyolojik etkileyicilerin dağılımını ve fonksiyonunu da etkiler. Bu etkileyiciler büyüme, farklılaşma ve hücresel ölüm mekanizmalarını düzenler. Bu modeller gen ve protein ekspresyonu düzeyinde biyokimyasal ve mekanik düzeyde olduğu gibi in vivo özelliklerini daha doğru yansıtır. [27]

Yukie Yoshii ve arkadaşlarının 2011 yılı başlarında yayımlanan bir çalışmalarında bahsettikleri üzere, nanobaskılı iskeleler kullanılarak tasarlanan 3 boyutlu sistemler, yerel tümör mikroçevresini daha iyi taklit ederek büyüme, göç ve hücreler arası tutunmayı desteklemiştir. İskeleler üzerine ekilen mezenkimal kök hücrelerinin sebebiyet verdiği sferoidlerin oluşumu, hücre proliferasyonunu ve canlığı hem korumuş hem de optimize etmiştir. Çalışmada bu modellerin, kanserde gözlemlenen patolojik anomalileri düzenleyen biyolojik mekanizmaları açığa çıkarmak için yararlı olduğu vurgulanmıştır. Nanobaskılı iskeleler, tümör hücrelerinin spontane göçünü kolaylaştırmak ve iyi düzenlenmiş sferoid oluşumunu teşvik etmek için 3 boyutlu kültür modelleri olarak kullanılmaktadır. [28] Buna ek olarak 3 boyutlu tümöroidler, inervasyon (sinirlenme) ve vaskülarizasyondan (damarlanma) yoksun olmalarıyla karakterize edilir. Üç katmanlı yapıları, uzun süreli hücresel bakım, yüksek genetik stabilite ve kriyoprezervayon (dondurarak saklama) imkânı sunmaktadır. [29]

3 boyutlu kullanımı sayesinde, araştırmacıların tümörleri spesifik olarak hedeflemek amacıyla nanoparçacıkları tasarladıkları ve bu sayede sistemik toksisiteyi, nanoparçacıkların vücuttaki bozulmasını ve iç organlarda birikimini engelledikleri, aynı zamanda biyolojik süreçleri etkilemeden çalıştıkları görülmektedir. Özellikle nanofarmakoterapötiklerin geliştirilmesinin erken aşamalarında ex vivo organoid modelleri kullanılabilmektedir. [30] [31]


1 Hücrelerin 3 boyutlu bir ortamda küresel bir şekilde kümeleşerek oluşturdukları yapıdır.

2 Bağ doku hücreleri tarafından sentezlenen, dokuda hücreler arası boşlukta bulunup hücreler arası iletişimi sağlayan ve iskelet görevi gören karışık bir yapıdır.

3 Bireyin veya organizmanın kendisinden elde edilen doku ve hücreleri ifade eder.

4 Organa yapısal destek sağlamakla ve besin maddelerini taşımakla görevli bir bağ doku türüdür.

5 Belirli bir hücre türüne farklılaşma potansiyeline sahip öncü hücrelerdir.

6 Dokuların gelişimi veya yenilenmesiyle ilgili süreçleri ifade eden bir terimdir.

Yoluyla
Tatullo, M., Marrelli, B., Benincasa, C., Aiello, E., Makeeva, I., Zavan, B., Ballini, A., De Vito, D., & Spagnuolo, G. (2020, August 31). Tumoroid. Encyclopedia.
Kaynak
[1] Atleework, K., & D’Amico, D. (2024, November 1). Cancer Research in 3D with Tumoroid Culture Medium. Life in the Lab. Thermo Fisher Scientific.[2] Tsai, S., McOlash, L., Palen, K. A., Johnson, B. D., Duris, C., Yang, Q., Dwinell, M. B., Hunt, B., Evans, D. B., Gershan, J. A., & James, M. A. (2018). Development of primary human pancreatic cancer organoids, matched stromal and immune cells and 3D tumor microenvironment models. BMC Cancer, 18, 335. [3] Phelan, M. A., Lelkes, P. I., & Swaroop, A. (2018). Mini and customized low-cost bioreactors for optimized high-throughput generation of tissue organoids. Stem Cell Investigation, 5, 33. [4] Vlachogiannis, G., Hedayat, S., Vatsiou, A., Jamin, Y., Fernández-Mateos, J., Khan, K., Lampis, A., Eason, K., Huntingford, I., Burke, R., Rata, M., Koh, D.-M., Tunariu, N., Collins, D., Hulkki-Wilson, S., Ragulan, C., Spiteri, I., Moorcraft, S. Y., Chau, I., … Valeri, N. (2018). Patient-derived organoids model treatment response of metastatic gastrointestinal cancers. Science, 359 (6378), 920–926.[5] Takahashi, T. (2019). Organoids for drug discovery and personalized medicine. Annual Review of Pharmacology and Toxicology, 59, 447–462. [6] Lv, D., Hu, Z., Lu, L., Lu, H., & Xu, X. (2017). Three-dimensional cell culture: A powerful tool in tumor research and drug discovery. Oncology Letters, 14(6), 6999–7010. [7] Bruno, R. D., Fleming, J. M., George, A. L., Boulanger, C. A., Schedin, P. J., & Smith, G. H. (2017). Mammary extracellular matrix directs differentiation of testicular and embryonic stem cells to form functional mammary glands in vivo. Scientific Reports, 7, Article 40196. [8] Mousavi, N., Truelsen, S. L. B., Hagel, G., Jørgensen, L. N., Harling, H., Timmermans, V., Melchior, L. C., Thysen, A. H., Heegaard, S., & Thastrup, J. (2019). KRAS mutations in the parental tumour accelerate in vitro growth of tumoroids established from colorectal adenocarcinoma. International Journal of Experimental Pathology, 100 (1), 12–18. [9] Collado, M., Gil, J., Efeyan, A., Guerra, C., Schuhmacher, A. J., Barradas, M., Benguría, A., Zaballos, A., Flores, J. M., Barbacid, M., Beach, D., & Serrano, M. (2005). Senescence in premalignant tumours. Nature, 436 (7051), 642. [10] Ganesh, K., Wu, C., O’Rourke, K. P., Szeglin, B. C., Zheng, Y., Sauvé, C.-E. G., Adileh, M., Wasserman, I., Marco, M. R., Kim, A. S., Shady, M., Sanchez-Vega, F., Karthaus, W. R., Won, H. H., Choi, S.-H., Pelossof, R., Barlas, A., Ntiamoah, P., Pappou, E., … Smith, J. J. (2019). A rectal cancer organoid platform to study individual responses to chemoradiation. Nature Medicine, 25 (10), 1607–1614. [11] Finnberg, N. K., Gokare, P., Lev, A., Grivennikov, S. I., MacFarlane, A. W., Campbell, K. S., Winters, R. M., Kaputa, K., Farma, J. M., Abbas, A. E., Grasso, L., Nicolaides, N. C., & El-Deiry, W. S. (2017). Application of 3D tumoroid systems to define immune and cytotoxic therapeutic responses based on tumoroid and tissue slice culture molecular signatures. Oncotarget, 8 (40), 66747–66757. [12] Bian, S., Repic, M., Guo, Z., Kavirayani, A., Burkard, T. R., Bagley, J. A., Krauditsch, C., & Knoblich, J. A. (2018). Genetically engineered cerebral organoids model brain tumor formation. Nature Methods, 15(8), 631–639. [13] Broutier, L., Mastrogiovanni, G., Verstegen, M. M. A., Francies, H. E., Gavarró, L. M., Bradshaw, C. R., Allen, G. E., Arnes-Benito, R., Sidorova, O., Gaspersz, M. P., Georgakopoulos, N., Koo, B. K., Dietmann, S., Davies, S. E., Praseedom, R. K., Lieshout, R., IJzermans, J. N. M., Wigmore, S. J., Saeb-Parsy, K., … Huch, M. (2017). Human primary liver cancer–derived organoid cultures for disease modeling and drug screening. Nature Medicine, 23 (12), 1424–1435. [14] Jensen, L. H., Dam, C., Hagel, G., Vagn-Hansen, C., Harling, H., Havelund, B. M., Jakobsen, A., Lindebjerg, J., Rafaelsen, S. R., Thastrup, O., & Hansen, T. F. (2019). Factors of importance in procuring tumoroids from colorectal liver metastasis biopsies for precision medicine. Annals of Oncology, 30 (Suppl. 5), v214. [15] Huch, M., & Koo, B. K. (2015). Modeling mouse and human development using organoid cultures. Development, 142 (18), 3113–3125. [16] Hohwieler, M., Müller, M., Frappart, P.-O., & Heller, S. (2019). Pancreatic progenitors and organoids as a prerequisite to model pancreatic diseases and cancer. Stem Cells International, 2019, Article 9301382. [17] Eguchi, T., Sogawa, C., Okusha, Y., Uchibe, K., Iinuma, R., Ono, K., Nakano, K., Murakami, J., Itoh, M., Arai, K., Fujiwara, T., Namba, Y., Murata, Y., Ohyama, K., Shimomura, M., Okamura, H., Takigawa, M., Nakatsura, T., Kozaki, K.-I., … Calderwood, S. K. (2018). Organoids with cancer stem cell-like properties secrete exosomes and HSP90 in a 3D nanoenvironment. PLoS ONE, 13 (2), Article e0191109. [18] Lee, G., Kenny, P., Lee, E. et al. Three-dimensional culture models of normal and malignant breast epithelial cells. Nat Methods 4, 359–365 (2007). [19] Mousavi, S., Moallem, R., Hassanian, S. M., Sadeghzade, M., Mardani, R., Ferns, G. A., Khazaei, M., & Avan, A. (2019). Tumor-derived exosomes: Potential biomarkers and therapeutic target in the treatment of colorectal cancer. Journal of Cellular Physiology, 234 (8), 12422–12432. [20] Jensen, L. H., Dam, C., Hagel, G., Vagn-Hansen, C., Harling, H., Havelund, B. M., Jakobsen, A., Lindebjerg, J., Rafaelsen, S. R., Thastrup, O., & Hansen, T. F. (2019). Factors of importance in procuring tumoroids from colorectal liver metastasis biopsies for precision medicine. Annals of Oncology, 30(Suppl. 5), v214. [21] Driehuis, E., Kolders, S., Spelier, S., Lõhmussaar, K., Willems, S. M., Devriese, L. A., de Bree, R., de Ruiter, E. J., Korving, J., Begthel, H., van Es, J. H., Geurts, V., He, G. W., van Jaarsveld, R. H., Oka, R., Muraro, M. J., Vivié, J., Zandvliet, M. M. J. M., Hendrickx, A. P. A., … Clevers, H. (2019). Oral mucosal organoids as a potential platform for personalized cancer therapy. Cancer Discovery, 9(7), 852–871. [22] Hill, S. J., & D’Andrea, A. D. (2019). Predictive potential of head and neck squamous cell carcinoma organoids. Cancer Discovery, 9 (7), 828–830. [23] Karakasheva, T. A., Lin, E. W., Tang, Q., Qiao, E., Waldron, T. J., Soni, M., Klein-Szanto, A. J., Sahu, V., Basu, D., Ohashi, S., Baba, K., Giaccone, Z. T., Walker, S. R., Frank, D. A., Wileyto, E. P., Long, Q., Dunagin, M. C., Raj, A., Diehl, J. A., … Rustgi, A. K. (2018). IL-6 mediates cross-talk between tumor cells and activated fibroblasts in the tumor microenvironment. Cancer Research, 78 (17), 4957–4970. [24] Pampaloni, F., Reynaud, E. G., & Stelzer, E. H. K. (2007). The third dimension bridges the gap between cell culture and live tissue. Nature Reviews Molecular Cell Biology, 8 (10), 839–845. [25] Birgersdotter, A., Sandberg, R., & Ernberg, I. (2005). Gene expression perturbation in vitro—A growing case for three-dimensional (3D) culture systems. Seminars in Cancer Biology, 15(5), 405–412. [26] Kim, J. B., Stein, R. C., & O'Hare, M. J. (2004). Three-dimensional in vitro tissue culture models of breast cancer — A review. Breast Cancer Research and Treatment, 85(3), 281–291. [27] Baker, B. M., & Chen, C. S. (2012). Deconstructing the third dimension – How 3D culture microenvironments alter cellular cues. Journal of Cell Science, 125(14), 3015–3024. [28] Yoshii, Y., Waki, A., Yoshida, K., Kakezuka, A., Kobayashi, M., Namiki, H., Kuroda, Y., Kiyono, Y., Yoshii, H., Furukawa, T., Asai, T., Okazawa, H., Gelovani, J. G., & Fujibayashi, Y. (2011). The use of nanoimprinted scaffolds as 3D culture models to facilitate spontaneous tumor cell migration and well-regulated spheroid formation. Biomaterials, 32(27), 6052–6058. [29] Marrazzo, P., Paduano, F., Palmieri, F., Marrelli, M., & Tatullo, M. (2016). Highly efficient in vitro reparative behaviour of dental pulp stem cells cultured with standardised platelet lysate supplementation. Stem Cells International, 2016, Article 7230987, 1–16. [30] Khaitan, D., & Dwarakanath, B. S. (2006). Multicellular spheroids as an in vitro model in experimental oncology: applications in translational medicine. Expert Opinion on Drug Discovery, 1(7), 663–675. [31] Millard, M., Yakavets, I., Zorin, V., Kulmukhamedova, A., Marchal, S., & Bezdetnaya, L. (2017). Drug delivery to solid tumors: The predictive value of the multicellular tumor spheroid model for nanomedicine screening. International Journal of Nanomedicine, 12, 7993–8007.

Buse Mehmetoğlu

Küçüklüğümden beri bilime ve insanlık yararına yapılan çalışmalara duyduğum ilgi beni Yıldız Teknik Üniversitesi Biyomühendislik Bölümü’nde bir öğrenim hayatına yönlendirdi, şu anda 22 yaşında ve okulda 4. senemdeyim. Şu anda Erasmus programı kapsamında Portekiz’de akademik gelişimimi sürdürüyorum. Yaklaşık 3 yıldır Gelecek Bilimde ailesindeyim ve kurguyla ilgileniyorum, bu sene akademik yazılarımla da sitemize katkıda bulunmaya başladım. Kısacası araştırmaya ve multidisipliner çalışmalara açık, bilimsel yeniliklere ilgi duyan bir mühendis adayıyım.
Başa dön tuşu